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生物纳米材料前沿
实现胰腺靶向递送标志着治疗胰腺疾病的突破,但精准递送仍具挑战 1 性。本文我们确定了胰腺选择性递送的明确且普遍的原则,并提出了 一种胰腺靶向脂质纳米颗粒(AH-LNP)用于 mRNA 递送。AH-LNP 在与蛋白质组装后表现出体积增大,促进囊滤介导的胰腺选择性积累和受体介导的胞吞作用,从而增强胰腺靶向能力。基于此,AH-LNP 通过递送 Cas9 mRNA 和单 导 RNA (sgRNA)实现胰腺基因组的精准高效编辑,展现出在自身免疫性胰腺疾病治疗中的积极潜力。此外,通过 AH-LNP 靶向递送编码治疗性细胞因子的 mRNA 在多种胰腺癌模型中,与癌症疫苗或嵌合抗原受体 T 细胞疗法结合时,展现出更优异的抗肿瘤疗效。AH-LNP 的安全性和胰腺 mRNA 递送在包括非人灵长类动物在内的多种动物模型中得到验证,显示出临床转化的巨大潜力。我们的发现凸显了这一胰腺靶向机制及其衍生的 LNP 平台的变革潜力,为针对多种胰腺疾病的精准治疗开发开辟了新途径。
该研究以题为“Pancreatic-targeted lipid nanoparticles based on organ capsule filtration”发表在Nature上。
图1
a人肠、脾脏、肾脏、肝脏和胰腺的H&E染色。秤棒,500微米(肠道)和100微米(脾脏、肾脏、肝脏和胰腺)。这些图像代表了 n = 3个独立实验。 b扫描电子显微镜图像,涵盖人体肠道、脾脏、肾脏、肝脏和胰腺。囊膜结构和肠壁以红色表示,实质细胞以黄色表示。600微米(肠道)和100微米(脾、肾、肝和胰腺)的秤条。这些图像代表了 n = 3个独立实验。 c三件ALC-0315-LNP@mRNA的动态光散射(DLS)结果露西 配方平均直径约为50纳米、150纳米和300纳米。 d注射ALC-0315-LNP@mRNA小鼠代表性体外生物发光成像露西 注射后6小时内不同直径的配方。李,肝脏;Pa,胰腺;sp,脾脏。 e注射ALC-0315-小鼠胰腺的主要器官的相对BLI LNP@mRNA露西 注射后6小时内不同直径的配方。 n = 3个生物独立的样本。数据均值± S.D.肠道内;气,肝脏。 f不同直径ALC-0315-LNP的器官靶向递送示意图。 g注射ALC-0315-LNPs@mRNA的Ai14报告小鼠肝脏、脾脏和胰腺的代表性共聚焦激光扫描显微镜(CLSM)图像克雷 直径分别为50纳米和300纳米。tdTom以红色显示。比例杆,100微米。这些图像代表了 n = 3个独立实验。 h注射ALC-0315-LNP@mRNA的Ai14报告小鼠肝脏、脾脏和胰腺的三维荧光成像克雷 直径为300纳米。小组 a 使用BioRender创建。
图2aAA-脂质(AA1–AA39-脂质)的一般公式及化学结构 l——氨基酸。 bAA-LNP制剂在30分钟腹膜灌洗液潜伏前后进行DLS结果。 n = 3个独立实验。数据均值± S.D. c注射不同AA-LNP@mRNA的小鼠IP体内生物发光成像露西 注射后6小时的配方。 n = 5个生物独立样本。 dAA46–AA125脂质的一般公式。注意AA47-脂质和AA87-脂质是同一种脂质;AA67-脂质和AA107-脂质是同一种脂质。 eAA46–AA125-LNP@mRNA的相对表达效率露西 配方归一化为AA2-LNP@mRNA露西. f,使用AA2-LNP@mRNA给药的小鼠ip主要器官的体外生物发光成像露西, AA66–AA85-LNP@mRNA露西 以及ALC-0315-LNP@mRNA露西 注射后6小时的配方。H,心形;陆,肺。 g利用正交筛选测定对AH-LNP进行制剂优化。 hALC-0315和AA76脂质的化学结构,以及注射对应LNP@mRNA小鼠体内生物发光成像露西 注射后6小时的配方。
图3
a代表性地对大鼠、兔子、狗和猪的主要器官进行体外生物发光成像,使用ALC-0315-LNP@mRNA露西 以及AH-LNP@mRNA露西 注射后6小时的配方。 b–e大鼠主要器官的BLI统计分析(b兔子(c),狗(d)和猪(e)与ALC-0315-LNP@mRNA一起施用的IP。露西 (灰色)或者AH-LNP@mRNA露西 (蓝色)注射后6小时的配方。 n = 5个生物独立样本。数据均值± S.D.统计分析采用普通双因子方差分析(ANOVA)及Šídák多重比较检验进行。 f代表性PET–CT成像,采用了IP。 89Zr-ALC-0315-LNP 或 89注射后6小时服用Zr-AH-LNP制剂。
图4
aVLDLR介导AH-LNP摄取过程示意图。 b,与腹膜洗液培养后AH-LNP–蛋白组装的示意图。 c,与腹膜灌洗液孵育后AH-LNP上吸附蛋白的肽评分。 d不同脂蛋白与AH-LNP上吸附蛋白的比较。高密度脂蛋白(HDL);IDL,中密度脂蛋白;LDL,低密度脂蛋白。 eVLDL蛋白和AH-LNP吸附蛋白的组成分析。 f对使用AH-LNP@mRNA的i.p.小鼠进行了代表性体内生物发光成像及相应统计分析露西 无论是否进行VLDL预处理。 n = 5个生物独立样本。数据均值± S.D.统计分析采用无配对双尾分析 t——测试。 g胰腺VLDLR表达的免疫组织化学(IHC)染色及相应的H&E染色。这些图像代表了 n = 3个独立实验。比例杆,100微米。 h,由scRNA-seq定义的UMAP蛋白单细胞可视化。 i,jmRNA的分布露西-正(i)和VLDLR正(j)注射AH-LNP@mRNA小鼠胰腺中的细胞露西. n = 12,270个单胞体。 kmRNA的比例露西胰腺间质细胞中的阳性细胞和VLDLR阳性细胞。小组 b 是用BioRender创建的。
图5
a携带Pan02小鼠的治疗时间表克拉斯 肿瘤。 bPan02的存活率克拉斯 携带肿瘤的小鼠经过多种治疗。 n = 10个生物独立样本。I,ALC-0315-LNP@mRNAIL-2;二号,AH-LNP@mRNAIL-2. c来自Pan02的主要器官体外生物发光成像克拉斯 携带肿瘤的小鼠经过多种治疗。St,胃。 dKPC小鼠的治疗计划。 eKPC小鼠在不同处理后的存活率。 n = 30个生物独立样本。 f第150天KPC小鼠肿瘤负荷分析。 g,基于门诊的胰腺肿瘤生物标志物分析示意图。 h携带患者源性肿瘤的NSG小鼠治疗时间表。 i,j腹部磁共振成像分析(i)以及存活率(j)在接受多种治疗后携带患者源性肿瘤的NSG小鼠。 n = 8(PBS)和 n = 10(Vax-mRNA克拉斯 + I 和 Vax-mRNA克拉斯 + II) 生物独立的样本。 kMSLN CAR建造示意图。 lRFP阳性CAR T细胞的流式细胞术结果。 mMSLN CAR T细胞的肿瘤溶解分析。 n = 3个生物独立的样本。 n携带Pan02小鼠的治疗时间表克拉斯 肿瘤。脑外伤,全身照射。 o携带Pan02小鼠的体内生物发光成像克拉斯 多种联合治疗后的肿瘤。 n = 5个生物独立样本。i,ALC-0315-LNP@mRNA抗PD-1×IL-2;二,AH-LNP@mRNA抗PD-1×IL-2. p携带Pan02小鼠的存活概况克拉斯 经过各种治疗后出现的肿瘤。 n = 10个生物独立样本。 q在第30天对小鼠不同处理后,体外Pan02细胞溶解测试。 n = 3个生物独立的样本。 r基于AH-LNP的mRNA治疗方法的胰腺癌免疫治疗示意图。TME,肿瘤微环境。数据均值± S.D.面板 a,d,g,h,n 以及 r 是通过BioRender创建的。
总结
该研究发现了一种基于器官包膜过滤的胰腺靶向递送普适性机制——腹腔内大尺寸纳米颗粒因无法穿透肝、脾等被覆致密包膜的器官,反而选择性富集于无包膜的胰腺。基于此,研究者设计出含精氨酸-组氨酸修饰的可电离脂质AH-LNP,其在腹腔液中与蛋白质组装后粒径由约100 nm增大至约360 nm,利用该尺寸效应实现胰腺选择性蓄积;同时其表面吸附的极低密度脂蛋白样蛋白冠可通过VLDLR介导内吞,赋予其高效mRNA递送能力。在非人灵长类中PET-CT显示,AH-LNP的胰腺/肝脏标准摄取值比值较对照LNP提升548.2倍。单细胞测序表明,AH-LNP主要转染胰腺中高表达VLDLR的间充质基质细胞,且因其向成纤维细胞和星状细胞的分化能力,递送Cas9 mRNA及sgRNA后可实现长达180天持续降低MHC-I表达(>85%敲低),有效减轻NOD小鼠自身免疫性胰腺炎中的T细胞浸润。
在多种胰腺癌模型中,AH-LNP递送IL-2 mRNA后诱导胰腺局部高浓度IL-2(约4,479 ng/g),联合KRAS G12D mRNA疫苗后使KPC小鼠肿瘤发生率从93.3%降至30.0%;在间皮素CAR-T治疗中,AH-LNP递送编码抗PD-1-IL-2融合蛋白的mRNA,使CAR-T细胞中GZMB+IFNγ+比例达42.1%,实现100%肿瘤完全缓解。该平台还可简化至仅含AA76-脂质与胆固醇的双组分体系,并有效兼容多种阳离子脂质,验证了包膜过滤机制的普适性。安全性评估显示AH-LNP不影响血糖稳态及肝肾功能,为非病毒载体在胰腺疾病精准治疗中的应用提供了新路径。
参考消息:
DOI: 10.1038/s41586-026-10158-7
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